Основным способом стерилизации хирургических инструментов является кипячение .

Для кипячения используют простые или электрические стерилизаторы, эмалированную посуду с крышкой.

Источником тепла может служить газовая или электрическая плита. Кипячением стерилизуют металлические, стеклянные, резиновые предметы. Перед кипячением инструменты разбирают, раскрывают, из инъекционных игл извлекают мандрены, а стеклянные и острые части инструментов заворачивают в 1-2 слоя марли. Кипятят в воде или в растворах каустической или двууглекислой соды. Продолжительность стерилизации с момента закипания воды составляет 20 минут, в щелочных растворах — 10-20. По истечении указанного срока сетку с инструментарием извлекают из стериализатора с помощью специальных крючков, а инструменты раскладывают на стерильную ткань или оставляют в стерилизаторе, предварительно слив воду. Шприцы обычно оставляют в воде до полного их охлаждения.

Стеклянные хирургические инструменты (шприцы), приборы (пробирки, мензурки) кипятят отдельно от металлических инструментов без добавления щелочей.

Резиновые предметы (трубки, перчатки, катетеры, дренажи) стерилизуют в автоклаве или в кипящей воде в течение 30 минут. Можно обрабатывать и химическими растворами путем погружения. Перчатки, надетые на руки, рекомендуют обрабатывать спиртовым раствором формалина.

Стерилизацию обжиганием (фламбированием) применяют для обеззараживания крупных инструментов и эмалированной посуды (тазы под инструменты). Инструменты кладут в эмалированную посуду или стерилизатор, обливают их небольшим количеством спирта и обжигают. Металлические инструменты можно фламбировать на огне спиртовки или подожженной ваты, смоченной спиртом. Данный метод стерилизации не очень хорош, так как в отверстиях, замках инструментов могут оставаться сгустки крови, шерсть, бактерии, а сами инструменты, особенно режущие их части, при обжигании сильно портятся.

Стерилизация инструментов химическими средствами относится к холодному способу стерилизации. Инструментарий полностью погружают на 30-60 минут в дезинфицирующие растворы: лизол, карболовая кислота, жидкость Каретникова, формалин, натрий карбонат, этиловый спирт, или на 4-6 часов — в перекись водорода. Антисептические растворы применяют и в случае, когда инструменты портятся от кипячения. Возможна газовая стерилизация, проводимая в специальных камерах и применяемая для стерилизации оптических, особо точных и дорогостоящих инструментов.

Стерилизуют хирургические инструменты и сухим воздухом (сухим жаром, в специальных термостатах) в течение 1,5 часа при определенной постоянной температуре.

В медицинской практике используют заводской метод стерилизации — гамма-лучами, ультрафиолетовыми лучами, ультразвуком (по строго определенным методикам).

Если вы нашли ошибку, пожалуйста, выделите фрагмент текста и нажмите Ctrl+Enter .

Деконтаминация (процесс уничтожения микроорганизмов в целях обеспечения инфекционной безопасности) хирургического инструментария складывается из дезинфекции, очистки и стерилизации. Инструменты после гнойных операций и перевязок, операций у больных, перенесших в течение 5 последних лет гепатит, а также при риске СПИДа обрабатываются отдельно от других. Все процедуры дезинфекции и обработки проводятся медперсоналом обязательно в перчатках из латекса достаточной толщины, халатах, масках, водонепроницаемых фартуках, защитных очках, с острыми предметами обращаются осторожно.

После использования инструменты промываются в емкости с дезинфицирующим раствором и погружаются в другую емкость с дезинфицирующим раствором так, чтобы раствор полностью покрывал инструменты. Экспозиция выдерживается в зависимости от применяемого дезинфицирующего раствора.

После обеззараживания инструменты промываются проточной водой. Очистка проводится путем погружения инструментов в специальный моющий раствор, в состав которого входит моющее средство, перекись водорода и вода. Экспозиция 15 - 20 минут при t 40 - 45 0 С. После этого инструменты моются щеткой в этом же растворе, а затем промываются в проточной и дистиллированной воде. Высушивание проводится в естественных условиях на простыне или в сухожаровом шкафу при t - 80 0 С 30 минут.

Стерилизация хирургических инструментов

Металлические хирургические не режущие инструменты стерилизуются в сухожаровом шкафу или в автоклаве. Есть инструменты одноразового использования, которые стерилизуются лучевым способом. Основным методом стерилизация режущих инструментов является холодный химический способ с применением растворов антисептиков, но можно стерилизовать в сухожаровом шкафу. Самым лучшим методом стерилизации для них является газовая или лучевая стерилизация. Стерилизация резиновых медицинских принадлежностей (катетеры, зонды, дренажи, наконечники, перчатки) проводится путем автоклавирования при 1 атм. в течение 30 минут.

В последнее время все чаще используются одноразовые медицинские резиновые и пластмассовые принадлежности, подвергшиеся лучевой заводской стерилизации. Для стерилизации оптических инструментов (лапароскоп, гастроскоп и пр.) применяются газовый способ и холодная химическая стерилизация.

ЛИТЕРАТУРА

1. Барыкина Н.В., Зарянская В.Г. Сестринское дело в хирургии. Ростов н/Д: «Феникс», 2004.

2. Руководство для средних медицинских работников / Под ред. Ю.П. Никитина, В.М. Чернышева. - М.: ГЭОТАР - Медиа, 2007.

3. Осипова В.Л. Дезинфекция: учебное пособие / В.Л. Осипова. - М.: ГЭОТАР - Медиа, 2009.

4. Постановление № 9 от 13 февраля 2009 года «Об утверждении санитарно-эпидемиологических правил СП 3.1.2485-09» «Профилактика внутрибольничных инфекций в стационарах (отделениях) хирургического профиля лечебных организаций» / Главная медицинская сестра, - 2009, № 5.

ü 1 этап. Дезинфекция.

Цель: Обезопасить себя от заражения инфекциями, передающимися через кровь.

Ø Инструментарий в разобранном виде помещают в накопитель с водой, где он должен находиться до момента дезинфекции.

Ø Дезинфекция проводится в другой ёмкости либо физическим методом (кипячение в дистиллированной воде 30 мин.), либо химическим (помещают в 3% хлорамин ан 30 мин. или в 4% Н 2 О 2 на 20 мин.).

Ø Промывают инструментарий проточной водой до исчезновения запаха дезинфицирующего средства.

Ø Обеззараживают накопитель (кипячение 30 мин. или засыпать на 60 мин сухой хлористой известью 200,0 на 1 л.).

ü 2 этап. Предстерилизационная очистка (ПСО).

Цель: Удаление с инструментария белковых, жировых и механических загрязнений, остатков ЛП.

Ø Погрузить инструментарий в тёплый моющий комплекс (40-50 0 С в зависимости от моющего средства) на 15 мин.

Ø Промыть щёткой, ватно-марлевым тампоном или ёршиком каждый инструмент в моющем комплексе 0,5 мин.

Ø Ополоснуть проточной водой 3-10 мин.

Ø Ополоснуть каждый инструмент дистиллированной водой 0,5 мин.

Ø Высушить горячим воздухом при t 0 80-85 0 С до полного исчезновения влаги.

Ø Провести контроль качества ПСО (см. ОСД).

ü 3 этап. Стерилизация.

Цель: Уничтожение споровых форм микробов.

Сухожаровой метод:

Ø Инструментарий разложен равно на подносе.

Ø Выдерживают 60 мин. при 180 0 С.

Ø Использовать в течение рабочей смены.

Автоклавирование:

Ø Упаковать инструментарий в х/б ткань или крепированную бумагу.

Ø Выдержать 20 мин. при 2 атм.

Химический метод:

Ø Погрузить в 1 из растворов:

v 6% Н 2 О 2 на 180 мин. при 50 0 С.

v 1% дезоксон-1 на 45 мин. при 20 0 С.

Ø Промыть в 2 стерильных ёмкостях водой по 5 мин. в каждой.

Ø Завернуть в стерильную простыню и хранить в стерильном биксе.

Ø Использовать в течение 3 сут.

Оценка результата:

Обработка операционного поля (ОП):

Последовательность действий: Подготовка ОП состоит из санитарно-гигиенической обработки кожи до операции и специальной обработки на операционном столе.

ü К плановой операции:

Ø Накануне операции провести полную санитарно-гигиеническую подготовку кожи (ванная, душ, частичная санитарная обработка с учётом состояния пациента).

Ø Смена постельного и нательного белья.

Ø В день операции обработать кожу антисептиком, высушить, провести сухое бритьё по ходу роста волос, обработать этиловым спиртом.

ü К экстренной операции:

Ø Провести частичную санитарную обработку кожи.

Ø Обработать кожу антисептиком, высушить, провести сухое бритьё по ходу роста волос, обработать спиртом.

ü На операционном столе:

Ø Широко обработать ОП двукратно от центра к периферии.

Ø Обработать ОП в месте разреза кожи.

Ø Ограничить ОП стерильным бельём.

Ø Повторить обработку ОП в месте разреза кожи.

Ø Обработать ОП перед наложением швов.

Ø Обработать ОП после наложения швов.

ü По ОСТу 42-21-2-85: 1% стодонат, 1% стодинол, 1% стодпирон, 0,5% хлоргексидинбиглюконат, АХД, АХД-2000, АХД-специаль, лизанин-ОП-Ред.

Ø Примечания:

v Если операция проводится под местным обезболиванием, то после анестезии обязательно дополнительно обработать кожу антисептиком.

v Для обработки ОП использовать окрашивающие кожу антисептики, они помогают отличить обработанные участки поля от необработанных.

v Для изоляции кожи ОП можно применить специальную стерильную пелёнку (протектор) Эмакрил.

Оценка результата: можно проверить только бактериологическим путём.

Контроль стерилизации.

ü Прямой метод:

Ø Бактериологический метод.Прямо отвечает есть ли микроб или его нет на той поверхности, которую мы проверяем. Берётся мазок, посев на п.с. Этот метод используется для контроля СЭР в лечебных учреждениях, потому что он не позволяет определить, можно ли сейчас использовать предмет (стерилен он или нет).

ü Непрямой метод:

Ø С помощью индикаторов. Меняют цвет. При закладке светлые – 120 0 С слегка песочного цвета – 132 0 С светло-коричневые – 180 0 С тёмно-коричневые (почти чёрные).

Ø С помощью химических веществ. Они запаиваются в ампулки, закладываются в бикс. При достижении нужнойt 0 вещество расплавляется и меняет цвет. Бензойная кислота при 120 0 С до стерильности серо-голубая, а после цвет сливы.Мочевина при 132 0 С до стерилизации розовая, после вишнёвого цвета. Тиомочевина, янтарная или виннокаменная кислота при 180 0 С до стерилизации белые, после жёлто-зелёные. Контрольное вещество обязательно подбирают с нужнойt 0 плавления.

Ø С помощью термо-временных индикаторов. Самоклеящаяся клеёнка, которая прикрепляется на упаковку или бикс, а после прикрепляется в журнал, где регистрируется стерилизация. ИТПС-120 – в автоклаве, до стерилизации салатовая, после чёрная. ИТПС-132 – в автоклаве, до стерилизации розовая, после фиолетово-коричневая. ИТСВ-180 – сухожаровой шкаф, до стерилизации голубая, после тёмно-серая (почти чёрная).

Надевание стерильного халата:

ü На себя. М/с д.б. в маске и колпаке, стерильный бикс д.б. на подставке, подготовленный к работе. – Подготовить руки. – Открыть крышку бикса ножной педалью, руки ниже пояса не опускать. – Проверить индикатор стерильности. – Щипцами для белья отогнуть выстилающую простыню, чтобы она закрывала края бикса снаружи. – Вынуть халат из бикса, взять сбоку другой рукой, не касаясь инструмента и вернуть инструмент в стерильный лоток. – Взять рукой за верхнюю часть и отпустить так, чтобы он развернулся, ничего не касаясь. – Развернуть внутренней стороной к себе. – Обе руки вдеть в рукава одновременно. – Санитарка берёт за внутреннюю сторону халата, не касаясь наружной стороны, поправляет его и завязывает тесёмки. – М/с завязывает рукава, оборачивая тесёмки вокруг запястья, кончики не заправляет за манжет халата к телу. – М/с достаёт из правого кармана пояс и подаёт его санитарке так, чтобы она смогла его завязать не касаясь рук м/с и халата. – Санитарка завязывает пояс сзади.

ü На врача. М/с д.б. в стерильном халате и перчатках. – Достаёт из бикса стерильный халат щипцами для белья. - Разворачивает его наружной стороной к себе, а внутренней к врачу так, чтобы он мог продеть обе руки в рукава. – Набросить халат на плечи. – Сзади завязывает операционная санитарка. – Врач вынимает пояс и подаёт санитарке, чтобы она не касалась руками халата. – Санитарка завязывает халат. – М/с подаёт перчатки.

Надевание стерильных печаток:

ü На себя. М/с д.б. в маске, колпаке, стерильном халате и с подготовленными руками. – Крышку бикса открыть нажатием педали, вынуть упаковку перчаток и положить на стерильный стол. – Стерильным пинцетом раскрыть упаковку, развернуть. – Левой рукой взять правую перчатку за отворот манжета с внутренней стороны. – Надеть перчатку на руку не расправляя манжеты. – 4 пальца руки в перчатки заводим под манжет левой перчатки. – Надеть перчатку. – Манжеты отвернуть на рукава халата.

Если пальцы попадают не на своё место, поправить их можно, когда обе руки в перчатках.

Перчатки снимать так , чтобы кожа не касалась загрязнённой поверхности перчаток.

ü На врача. М/с д.б. в стерильном халате и перчатках, врач д.б. в халате. – Подвести по 4 пальца под манжеты перчаток, растянуть и подать врачу так, чтобы манжеты перчаток закрывали манжеты халата. – Шариком со спиртом обработать перчатки на руках.

Виды перчаток:

ü Синтетические. - Латексные.

ü Опудренные. - Неопудренные.

ü Диагностические. - Хирургические.

ü Стерильные. - Нестерильные.

Все перчатки д.б. прочными, не обладать аллергичностью, химически стойкие, комфортные (эластичные, с хорошей чувствительностью.

Средства для дезинфекции и стерилизации:

ü Лизоформин–3000. Применяется для дезинфекции и стерилизации ИМН. ИМН погружают на 1 ч. Для дезинфекции 1,5, 0,75, 2%, для стерилизации 8%.

ü Бланизол. Для ПСО ИМН, эндоскопов 1% раствор. Можно добавлять в Лизоформин-3000, для того, чтобы усилить его свойства.

ü Дезоформ. Для дезинфекции ИМН из любого материала 1, 3, 5%.

ü Лизанол. Кожный антисептик .

ü Хлорапин. Обработка всего. В таблетках и гранулах.

ü Амидин. Кожный антисептик . Для обработки рук, ОП, мест инъекций, медицинских перчаток, обуви.

Накрытие стерильного стола для перевязочного кабинета:

Оснащение: Бикс с 5 стерильными простынями; бикс со стерильной клеёнкой; стерильный лоток с инструментарием; щипцы для белья; 2 корнцанга; 2 цапки.

Алгоритм:

ü Застелить стол стерильной клеёнкой в 1 слой в направлении от себя .

ü Ножной педалью открыть крышку бикса. Проверить индикатор. Щипцами для белья отогнуть выстилающую простыню.

ü Достать щипцами 1 простыню . Развернуть в 1 слой . Поверх клеёнки так, чтобы она максимально закрывала ножки стола , но не касалась пола.

ü 2 простынь в 2 слоя . Так, чтобы она свисала с края стола на 20-25 см .

ü 3 простынь в 2 слоя . Так, чтобы свисала с края стола на 10 см .

ü 4 простынь так же как 3 .

ü 5 простынь в 1 слой . Так, чтобы перекрыла край 2 простыни .

ü Корнцанги наложить на края 5 простыни на уровне углов стола.

ü Поднимаем простынь за корнцанги и складываем гармошкой на дальнем конце стола в направлении от себя к себе . Последнее направление на себя.Кладём корнцанги кольцами друг к другу.

ü Захватываем цапками 2 слоя 4 простыни и 1 слой 3 . Складываем гармошкой поверх корнцангов. Цапки кладём кольцами друг к другу .

ü На поверхность кладём всё необходимое для перевязки. Берём цапки и перекрываем . Берём корнцанги иперекрываем .

Стерилизация – это процесс устранения всех форм жизни, в том числе и инфекционных агентов (грибы, бактерии, споры, вирусы), которые присутствуют на поверхностях, содержатся в жидкостях.

Подвергаться обязательной стерилизации должны:

Предметы, которые соприкасаются с поверхностью ран, имеют контакт с кровью и инъекционными препаратами

Диагностическая аппаратура, которая соприкасается со слизистыми оболочками и может вызвать их повреждение.

Выделяют три основных этапа стерилизации:

Дезинфекция

Предстерилизационная очистка

Стерилизация

Стерилизация достигается путем применения термической, химической или радиоактивной обработки.

Качество стерилизации во многом зависит от контакта стерилизующего агента с поверхностью стерилизуемого инструмента. Выбор агента связан с природой инструмента, который необходимо стерилизовать.

Процесс стерилизации происходит в специальном устройстве, которое называется стерилизатор .

Методы стерилизации

1) Термический метод стерилизации

- Паровая стерилизация (автоклавирование)

При термической обработке гибнут живые организмы. Этот процесс ускоряется при добавлении влаги, но обычного пара недостаточно для стерилизации. Необходимо давление, больше атмосферного, что позволит повысить температуру пара для термического разрушения микробной жизни. Пар под давлением вызывает денатурацию и коагуляцию белка и его ферментов в клетках.

Устройство, в котором происходит стерилизация паром, называется автоклав. Весь цикл стерилизации в автоклаве может занять от 15 до 60 минут, в зависимости от давления, температуры и материала стерилизуемых инструментов.

Автоклавирование подходит для предметов, которые переносят влажность, высокое давление (от 1 до 3,5 атмосфер выше внешней среды), а также высокую температуру (от + 121°С до + 148 °C). Например, хирургические инструменты.

Отличным представителем устройств для паровой стерилизации является серия автоклавов Statim . Компактные кассетные стерилизаторы продлевают срок службы хрупких инструментов.

- Воздушная стерилизация (сухожаровой шкаф)

Сухое тепло в виде горячего воздуха используется в основном для стерилизации объектов на основе безводных масел, нефтепродуктов и порошков, что не может быть стерилизовано посредством пара и газа. Гибель микробных организмов происходит за счет окисления и медленного процесса сжигания белка в клетках. При отсутствии влаги в процессе стерилизации требуются более высокие температуры.

- Микроволновая стерилизация

Под действием не ионизирующих излучение микроволн, создаются гипертермические условия, которые нарушают жизненные процессы микроорганизмов. Температура цикла ниже, чем при стерилизации паром. Время цикла гораздо меньше – 30 секунд. Металлические инструменты могут быть стерилизованы, если их поместить в условия частичного вакуума, в стеклянной емкости. Стерилизатор такого типа отлично подойдет для небольших объемов стерилизации.

2) Химический метод стерилизации

- Стерилизация газом

Окись этилена. Основной цикл стерилизации состоит из пяти этапов и занимает около 2,5 часов, за исключением времени аэрации. Газ вступает в химическую реакцию с аминокислотами, белками, ДНК и предотвращает размножение микробных организмов.

Такой метод стерилизации подходит для предметов, которые не могут выдержать высокую температуру и влажность, необходимую для паровой стерилизации. Благодаря низким температурным условиям (+ 30 ° до + 60 ° C), данный метод стерилизации хорошо подходит для медицинских устройств со встроенной электроникой. Недостаток метода – легкая воспламеняемость.

Формальдегид. Газ убивает микроорганизмы путем коагуляции белка в клетках. Данный метод стерилизации является сложным и менее эффективным, чем другие методы стерилизации. От его использования для стерилизации почти отказались в Соединенных Штатах, Канаде и Австралии, но он до сих пор используется в некоторых странах Европы и Азии.

- Плазменная стерилизация

Плазма представляет собой состояние вещества отличное от твердого, жидкого или газообразного состояния. Это состояние достигается за счет создания сильного электрического или магнитного поля. Свободные радикалы перекиси водорода взаимодействуют с клеточными мембранами, ферментами, нуклеиновыми кислотами и нарушают жизненные функции микроорганизмов.

Основной цикл плазменной стерилизация состоит из четырех этапов (создание вакуума, Н2О2 инъекция, диффузия, плазменный разряд). Процесс занимает от 1 до 3 часов.

Данный метод стерилизации подходит для объектов, которые не могут выдержать высокую температуру и влажность, необходимую для паровой стерилизации.

- Стерилизация озоном

Озон является формой кислорода. Процесс стерилизации происходит посредством окисления, разрушения органических и неорганические веществ. Озон проникает в мембрану клетки, вызывая ее взрыв. Озон является нестабильным газом, но может быть легко генерирован из кислорода. Время цикла - до 60 минут в зависимости от размера камеры или нагрузки.

3) Радиационный метод стерилизации

Является наиболее эффективным методом стерилизации, но ограничивается только использованием в коммерческих целях.

Ионизирующее излучение производит ионы, которые выбивают электроны из атомов. Эти электроны ударяют смежный атом и либо присоединяются, либо выбивают электрон из второго атома. Ионная энергия преобразуется в тепловую и химическую энергию. Эта энергия вызывает гибель микроорганизмов путем разрушения молекулы ДНК, что предотвращает клеточное деление и распространение биологической жизни. Основными источниками ионизирующего излучения являются бета-частицы и гамма-лучи.

Каждый метод стерилизации имеет свои особенности. При выборе того или иного метода, следует учитывать возможные побочные эффекты, особенно когда речь идет о стерилизации различных электронных устройств.

Необходимость стерилизации ветеринарного инструмента понятна интуитивно - она призвана предупредить проникновение микроорганизмов в обрабатываемую рану и, как следствие, заражение пациента при контакте.

Общие сведения

В медицинской и ветеринарной практике широко применяются различные виды стерилизации, которые подразделяются на:

• физические;
• химические методы.

Классические представители первой группы такие методы тепловой стерилизации, как кипячение, пастеризация, обработка паром под давлением, сухим жаром, ультразвуковая и лучевая стерилизации.

При химических методах микроорганизмы удаляются различными растворами: йода, формалина, кислот и т.д.

Основные методы стерилизации

Метод кипячения долгое время был и остается самым распространенным. Его суть в нагреве инструмента в дезинфекционном кипятильнике в дистиллированной воде с 2% раствором бикарбоната натрия. Кипячение применяется для обработки металлических емкостей и неострого инструмента. Режущие изделия быстро портятся при кипячении, из-за чего скальпели, ножницы и т.д. погружают в кипятильник примерно на 2 минуты, после чего на несколько часов погружают в спирт. В настоящее время стерилизация кипячением в медицине применяется редко, поскольку некоторые микроорганизмы погибают только при температурах в 150-200 градусов - при обработке паром или прокаливании в сухожаровом шкафу.

Специальные паровые стерилизаторы современных моделей полностью автоматизированы. Это позволяет обрабатывать каждый тип инструмента (упакованных в специальные биксы) по заданной производителем программе, которая гарантирует высокую степень асептики. Помимо инструмента паром можно стерилизовать многоразовые катетеры, дренажи, рукавицы, белье и т.д. По окончании стерилизации паром проводится бактериологический контроль стерильности с помощью специальных индикаторов.

Использование пара при стерилизации - фактор риска ожогов, которого лишены электрические сухожаровые шкафы. Отсутствие влаги, к тому же хорошо обрабатывать режущий инструмент без риска снижения его качеств и срока эксплуатации. После укладки обрабатываемого инвентаря за 10-15 минут происходит разогрев до 140 градусов и затем, при необходимости, до 200 градусов. Сухожаровые шкафы могут быть различных размеров и располагаются в непосредственной близости от операционной: забор обработанного инструмента выполняется исключительно в стерильной одежде.

Газовая стерилизация применяется для обработки полимерных изделий и основана на свойствах окиси этилена (и некоторых других газов) оказывать бактерицидное воздействие на инструмент. Недостаток - взрывоопасность (приходится добавлять в состав углекислый газ) и длительное время на ожидание, пока газ полностью не выйдет из внутренней структуры.

Лучевая стерилизация широко распространена при обработке шовного материала , одноразовых шприцов, катетеров и т.д. Ионизирующее излучение полностью удаляет микроорганизмы, что в сочетании с последующей стерильной упаковкой, позволяет хранить стерилизованные лучевым методом инструменты и приспособления длительные месяцы и даже годы.